Разработка оптимальных условий криоконсервации тканеинженерных роговичных конструкций

Авторы

  • С.А. Борзенок НМИЦ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва; МГМСУ им. А.И. Евдокимова Минздрава России, Москва
  • С.В. Костенев ФГАУ «НМИЦ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва
  • А.В. Дога ФГАУ «НМИЦ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва
  • В.Г. Ли ФГАУ «НМИЦ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва
  • Д.С. Островский ФГАУ «НМИЦ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва
  • М.Х. Хубецова ФГАУ «НМИЦ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва

Ключевые слова:

криоконсервация, лентикула, роговица, децеллюляризация, тканевая инженерия

Аннотация

Актуальность. В последние годы в условиях дефицита донорских роговиц активно обсуждается необходимость разработки в глазных тканевых банках системы подготовки и хранения стромальных лентикул для их клинического применения в офтальмохирургии. На сегодня имеющиеся работы посвящены поиску оптимальных условий для хранения нативных лентикул. В литературе еще не встречались сообщения о хранении децеллюляризированных лентикул. Цель. Разработать оптимальные условия криоконсервации стромальных тканеинженерных роговичных конструкций
(ТК) для последующего создания криобанка.

Материал и методы. Оптические свойства нативных лентикул и ТК оценивали спектрофотометрически. Для создания ТК был использован протокол децеллюляризации с 1,5 М NaCl с ДНКазой 5 Ед/мл и РНКазой 5 Ед/
мл. Для дегидратации ТК непосредственно перед криоконсервацией был использован разрешенный к клиническому применению в офтальмологии дисперсный вискоэластик. Были сформированы
три группы сравнения: 1-я – контрольная группа (нативные лентикулы), 2-я – группа без дегидратации ТК, 3-я – группа с дегидратацией ТК. Данные спектрофотометра оценивались в 2 этапа. На 1-м этапе измеряли прозрачность контрольной группы. На 2-м этапе исследовали прозрачность двух опытных групп после хранения в растворе диметилсульфоксида (DMSO) (группа без дегидратации ТК и
группа с дегидратацией ТК).

Результаты. Анализ данных не выявил статистической разницы при сравнении как между группами
без дегидратации ТК; с дегидратацией ТК и контролем (p≥0,05), так
и при попарном сравнении групп без дегидратации ТК и групп с дегидратацией ТК (p≥0,05).

Заключение. Группы с дегидратацией ТК и без дегидратации ТК после хранения в DMSO не различались по
прозрачности. В связи с этим данные группы могут рассматриваться как взаимозаменяемые по оптическим свойс твам.

Библиографические ссылки

Sekundo W, Kunert KS, Blum M. Small incision corneal refractive surgery using the small incision lenticule extraction (SMILE) procedure for the correction of myopia and myopic astigmatism: results of a 6 month prospective study. Br J Ophthalmol. 2011;95(3): 335–339. doi: 10.1136/bjo.2009.174284

Jacob S, Dhawan P, Tsatsos M, et al. Fibrin glue-assisted closure of macroperforation in predescemetic deep anterior lamellar keratoplasty with a donor obtained from small incision lenticule extraction. Cornea. 2019;38(6): 775–779. doi: 10.1097/ICO.0000000000001918

Angunawela RI, Riau AK, Chaurasia SS, et al. Refractive lenticule re–implantation after myopic ReLEx: a feasibility study of stromal restoration after refractive surgery in a rabbit model. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012;53(8): 4975–4985. doi: 10.1167/ iovs.12-10170

Williams GP, Wu B, Liu YC, et al. Hyperopic refractive correction by LASIK, SMILE or lenticule reimplantation in a non–human primate model. PLoS One. 2018;13(3): e0194209. doi: 10.1371/journal.pone.0194209

Zhao J, Shen Y, Tian M, et al. Corneal lenticule allotransplantation after femtosecond laser small incision lenticule extraction in rabbits. Cornea. 2017;36(2) :222–228. doi: 10.1097/ICO.0000000000001076

Pradhan KR, Reinstein DZ, Carp GI, et al. Femtosecond laser-assisted keyhole endokeratophakia: correction of hyperopia by implantation of an allogeneic lenticule obtained by SMILE from a myopic donor. J Refract Surg. 2013;29(11): 777–782. doi: 10.3928/1081597X-20131021-07

Sun L, Yao P, Li M, et al. The Safety and predictability of implanting autologous lenticule obtained by SMILE for hyperopia. J Refract Surg. 2015;31(6): 374–379. doi: 10.3928/1081597X-20150521-03

Jacob S, Kumar DA, Agarwal A, et al. Preliminary evidence of successful near vision enhancement with a new technique: prEsbyopic allogenic refractive lenticule (PEARL) corneal inlay using a SMILE lenticule. J Refract Surg. 2017;33(4): 224–229. doi: 10.3928/1081597X-20170111-03

Zhao J, Shang J, Zhao Y, et al. Epikeratophakia using small-incision lenticule extraction lenticule addition combined with corneal crosslinking for keratoconus. J Cataract Refract Surg. 2019;45(8): 1191–1194. doi: 10.1016/j.jcrs.2019.03.010

Lazaridis A, Reinstein DZ, Archer TJ, et al. Refractive lenticule transplantation for correction of iatrogenic hyperopia and high astigmatism after LASIK. J Refract Surg. 2016;32(11): 780–786. doi: 10.3928/1081597X-20160726–01

Crapo PM, Gilbert TW, Badylak SF. An overview of tissue and whole organ decellularization processes. Biomaterials. 2011;32(12): 3233–3243. doi: 10.1016/j. biomaterials.2011.01.057

Ganesh S, Brar S, Rao PA. Cryopreservation of extracted corneal lenticules after small incision lenticule extraction for potential use in human subjects. Cornea. 2014;33(12): 1355–1362. doi: 10.1097/ICO.0000000000000276

Tripathi H, Mehdi MU, Gupta D, et al. Long-term preservation of donor corneas in glycerol for keratoplasty: exploring new protocols. Br J Ophthalmol. 2016;100(2): 284–290. doi: 10.1136/bjophthalmol-2015-306944

Lambert NG, Chamberlain WD. The structure and evolution of eye banking: a review on eye banks’ historical, present, and future contribution to corneal transplantation. Journal of Biorepository Science for Applied Medicine. 2017;5: 23– 40. doi: 10.2147/BSAM.S114197

Shafiq MA, Gemeinhart RA, Yue BY, Djalilian AR. Decellularized human cornea for reconstructing the corneal epithelium and anterior stroma. Tissue Eng Part C Methods. 2012;18(5): 340–348. doi: 10.1089/ten.TEC.2011.0072

Trias E, Gallon P, Ferrari S, et al. Banking of corneal stromal lenticules: a risk– analysis assessment with the EuroGTP II interactive tool. Cell Tissue Bank. 2020;21(2): 189–204. doi: 10.1007/s10561-020-09813-8

Mohamed–Noriega K, Toh KP, Poh R, et al. Cornea lenticule viability and structural integrity after refractive lenticule extraction (ReLEx) and cryopreservation. Mol Vis. 2011;17: 3437–3449. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4218759/ [Accessed 11th February 2021]

Liu YC, Williams GP, George BL, et al. Corneal lenticule storage before reimplantation. Mol Vis. 2017;23: 753–764. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5661854/ [Accessed 11th February 2021]

Загрузки

Опубликован

2022-04-17

Выпуск

Раздел

Статьи

Категории

Наиболее читаемые статьи этого автора (авторов)

1 2 3 > >>