Изменение корнеального эпителия при коррекции миопии методами SMILE и FemtoLASIK
Ключевые слова:
миопия, SMILE, FemtoLASIK, гипертрофия эпителия, фемтосекундный лазерАннотация
Цель. Провести сравнительный анализ толщины и топографического распределения корнеального эпителия на различных этапах послеоперационного периода у пациентов с миопией средней степени после рефракционных операций, проведенных методами SMILE и FemtoLASIK.
Материал и методы. Всего было обследовано 152 пациента c миопией средней степени. В зависимости от вида рефракционной операции было сформировано две группы сравнения: 1-я группа – 68 пациентов с миопией средней степени, прооперированных методом SMILE; 2-я группа – 84 пациента с миопией средней степени, прооперированных методом FemtoLASIK. Обследования проводили перед операцией и в послеоперационном периоде с кратностью 1, 5 суток, 3, 6, 12 месяцев после операции.
Результаты. Суммарный показатель толщины эпителия после операции SMILE изменился в целом к году с 52,41±8,45 до 55,21±9,01 (р>0,05). После операции FemtoLASIK отмечено постепенное увеличение толщины эпителия с первых суток до года, без явной тенденции к стабилизации, с 51,77±10,09 до 57,30±9,5 (р<0,001). Разница между группами сравнения была статистически достоверна (р<0,05). Также отмечена топографическая разница максимальных показателей гипертрофии эпителия при различных типах операции.
Заключение. Технология SMILE сопровождается асимметричной гипертрофией эпителия в темпоральных и нижне-темпоральных зонах и носит завершенный характер уже к 3-м месяцам послеоперационного периода, в отличие от FemtoLASIK, где отмечено практически 1,5-кратное превышение толщины корнеального эпителия и отсутствие значимой стабилизации даже через 12 месяцев после операции, что свидетельствует о продолжающемся ремоделировании роговицы и незавершенном процессе послеоперационного заживления.
Библиографические ссылки
1. Анисимов С.И., Лукьянчук Б.С. Избранные задачи теории лазерной абляции. Успехи физических наук. 2002;172(3): 301–333. [Anisimov SI, Lukyanchuk BS. Selected problems of the theory of laser ablation. Advances in Physical Sciences. 2002;172(3): 301–333. (In Russ.)]
2. Роудз Ч. Эксимерные лазеры. М.: Мир;1981. [Rhodes Ch. Excimer lasers. Moscow: Mir;1981. (In Russ.)]
3. Straub L. New generation of femtosecond lasers emerges. J Cataract Refract Surg Today. 2010;43: 55–63.
4. Крюков П.Г. Лазеры ультракоротких импульсов. Квантовая электроника. 2001;2(31): 95. [Kryukov P.G. Ultrashort pulse lasers. Lasers & Their Applications. 2001;2(31): 95. (In Russ.)]
5. Maatz G, Heisterkamp A. Chemical and physical side effects at application of ultrashort laser pulses for intrastromal refractive surgery. J Opt. 2000;2: 59–64.
6. Alio JL, Javaloy J. Corneal inflammationfollowing corneal photoablative refractive surgery with excimer laser. Surv Ophthalmol. 2013;58: 11–25.
7. Cohen D, Chuk R, Berman G, et al. Ablation spectra of human cornea. J Biomed Opt. 2001;6(3): 339–343.
8. Корниловский И.М., Касимов Э.М., Султанова А.И. Особенности воспалительно-регенераторной реакции при эксимерлазерной рефракционной кератэктомии с фотопротекцией. Казанский медицинский журнал. 2017;98(1): 53–57. doi: 10.17750/KMJ2017-53
9. Ashoori M, Saedisomeolia A. Riboflavin (vitamin B2) and oxidative stress: a review. Br J Nutr.2014;111(11): 1985–1991.
10. Javier T-J, Larrañaga A, Hanneken L. Corneal regeneration after photorefractive keratectomy: a review. J Optom. 2015;8(3): 149–169.
11. Soong HK, Malta JB. Femtosecond lasers in ophthalmology. Am J Ophthalmol. 2009;147(2): 189–197.
12. Luft N, Schumann RG, Dirisamer M. Wound healing, inflammation and corneal ultrastructure after SMILE and femtosecond laser-assisted LASIK: A human ex vivo study. J Refract Surg. 2018;34(6): 393–399.
13. Agrawal VB, Tsai RJ. Corneal epithelial wound healing. Indian J Ophthalmol. 2003;51: 5–15.
14. Allen-Hoffmann BL, Schlosser SJ, Brondyk WH, et al. Fibronectin levels are enhanced in human fibroblasts overexpressing the c-sis protooncogene. J Biol Chem. 1990;265: 5219–5225.
15. Asari A, Morita M, Sekiguchi T, et al. Hyaluronan, CD44 and fibronectin in rabbit corneal epithelial wound healing. Jpn J Ophthalmol. 1996;40: 18 25.
16. Fujikawa LS, Foster CS, Harrist TJ, Lanigan JM, Colvin RB. Fibronectin in healing rabbit corneal wounds. Lab Invest. 1981;45: 120–129.
17. Soong HK. Vinculin in focal cell-to-substrate attachments of spreading corneal epithelial cells. Arch Ophthalmol. 1987;105: 1129–32.
18. Nakagawa S, Nishida T, Manabe R. Actin organization in migrating corneal epithelium of rabbits in situ. Exp Eye Res. 1985;41: 335–3343.
19. P äällysahoT, Williams DS. Epithelial cell-substrate adhesion in the cornea: localization of actin, talin, integrin, and fibronectin. Exp Eye Res.1991;52: 261–267. doi: 10.1016/0014-4835(91)90089
20. Yu FX, Guo J, Zhang Q. Expression and distribution of adhesion molecule CD44 in healing corneal epithelia. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1998;39: 710.
21. Kuwabara T, Perkins DG, Cogan DG. Sliding of the epithelium in experimental corneal wounds. Invest Ophthalmol. 1976;15: 4–14.
22. Crosson CE, Klyce SD, Beuerman RW. Epithelial wound closure in the rabbit cornea. A biphasic process. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1986;27: 464-473.
23. Frati L, Daniele S, Delogu A, Covelli I. Selective binding of the epidermal growth factor and its specific effects on the epithelial cells of the cornea. Exp Eye Res. 1972;14: 135–141.
24. Cotsarelis G, Cheng SZ, Dong G, Sun TT, Lavker RM. Existence of slow-cycling limbal epithelial basal cells that can be preferentially stimulated to proliferate: implications on epithelial stem cells. Cell. 1989;57: 201–209.
25. Chung EH, Hutcheon AE, Joyce NC, Zieske JD. Synchronization of the G1/S transition in response to corneal debridement. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1999;40: 1952–1958.
26. Imanishi J, Kamiyama K, Iguchi I, et al. Growth factors: importance in wound healing and maintenance of transparency of the cornea. Prog Retin Eye Res. 2000;19: 113–129.
27. Yu FS, Yin J, Xu K, et al. Growth factors and corneal epithelial wound healing. Brain Res Bull 2010;81: 229–235.
28. Vesaluoma M, Teppo AM, Grönhagen-Riska C, et al. Release of TGFbeta 1 and VEGF in tears following photorefractive keratectomy. Curr Eye Res. 1997;16: 19–25.
29. Nishimura T, Toda S, Mitsumoto T, et al. Effects of hepatocyte growth factor, transforming growth factor-beta1 and epidermal growth factor on bovine corneal epithelial cells under epithelial-keratocyte interaction in reconstruction culture. Exp Eye Res. 1998;66: 105–116.
30. Gipson IK. Adhesive mechanisms of the corneal epithelium. Acta Ophthalmol Suppl. 1992: 13–17.
31. Gipson IK, Spurr-Michaud S, Tisdale A, Keough M. Reassembly of the anchoring structures of the corneal epithelium during wound repair in the rabbit. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1989;30: 425–434.
32. McGee HT, Fraunfelder FW. Toxicities of topical ophthalmic anesthetics. Expert Opin Drug Saf. 2007;6(6): 637–640.
33. Boljka М, Kolar G, Vidensek J. Toxic side effects of local anaesthetics on the human cornea. Br J Ophthalmol. 1994;78(5): 386–9.doi: 10.1136/ bjo.78.5.386
34. Li L, Niu B, et al. Qin M. Confocal comparison of corneal reinnervation after small incision lenticule extraction (SMILE) and femtosecond laser in situ keratomileusis (FS-LASIK). PLoS One. 2013;8(12).
Опубликован
Лицензия
Copyright (c) 2023 ОФТАЛЬМОХИРУРГИЯ
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.
